貨號：YC2306 規(guī)格：50管/48樣
總抗氧化能力（Total antioxidant capacity ，T-AOC）
試劑盒說明書
可見分光光度法
注意：正式測定之前選擇 2-3個預期差異大的樣本做預測定。
測定意義
測定對象中各種抗氧化物質和抗氧化酶等構成總抗氧化水平。在生物學、醫(yī)學和藥學研究中常常檢測血漿、血清、唾液、尿液等各種體液，細胞或組織等裂解液、植物或中草藥抽提液及各種抗氧化物(antioxidant)溶液的總抗氧化能力。
測定原理
在酸性環(huán)境下，物質還原Fe3+-三吡啶三吖嗪(Fe3+-TPTZ)產生藍色的Fe2+-TPTZ的能力反映了其總抗氧化能力。
自備實驗用品
可見分光光度計、恒溫水浴鍋、低溫離心機、1mL 玻璃比色皿和蒸餾水。
試劑組成和配制
提取液：液體 60mL×1 瓶，使用前預冷。
試劑一：液體 50mL×1 瓶，避光保存。
試劑二：液體 5mL×1 瓶，4℃避光保存。
試劑三：液體 5mL×1 瓶，避光保存。
樣品的制備
(1) 血清、血漿、唾液或尿液樣品
血漿（制備時可以使用肝素或檸檬酸鈉抗凝，不宜使用 EDTA 抗凝）4℃，5000rpm 離心10min，取上清待測。血清、唾液或尿液樣品直接用于測定，也可以-80℃凍存（不宜超30 d）后再測定。
(2) 組織樣品
按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1mL提取液）進行冰浴勻漿，然后 10000g，4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。
(3) 細胞樣品
按照細胞數量（104個）：提取液體積（mL）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細胞加入1mL 提取液），冰浴超聲波破碎（功率 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；10000g，4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。
操作步驟
混合液(現(xiàn)配現(xiàn)用)：將試劑一、試劑二、試劑三按 10:1:1 的比例混合，使用前預溫至 37℃ 。
| 空白管 | 測定管 |
混合液（μL） | 900 | 900 |
樣品（μL） |
| 30 |
雙蒸水（μL） | 120 | 90 |
充分混勻，反應10min，雙蒸水調零，1mL玻璃比色皿，測定593nm處吸光值，△A= A測定 -A空白 | ||
注意：空白管只需測定一次。
總抗氧化能力計算
1. 定義：樣品的抗氧化能力以達到同樣吸光度變化值（△A）所需的標準液離子濃度表示。
標準曲線為 y=0.6308 x +0.1291，R2=0.9989
2. 計算公式：
(1)按蛋白濃度計算
總抗氧化能力（U/mg prot）=1÷0.6308×（△ A-0.1291）× V 反總÷（V 樣× Cpr）
=53.9×（△ A-0.1291）÷ Cpr
(2)按樣品質量計算
總抗氧化能力（U/g）=1÷0.6308×（△ A-0.1291）× V 反總÷（V 樣÷V 樣總×W）
=53.9×（△ A-0.1291）÷ W
(3)按細胞數量計算
總抗氧化能力（U/104 cell）=1÷0.6308×（△A-0.1291）×V 反總÷V 樣×V 樣總÷細胞數量（萬個）= 53.9×（△A-0.1291）÷ 細胞數量（萬個）
(4)按液體體積計算
總抗氧化能力（U/mL）=1÷0.6308×（△A-0.1291）× V 反總÷V 樣
=53.9×（△A-0.1291）÷ Cpr
V 樣總：加入提取液體積，1 mL； V 反總：反應總體積，1.02mL；V 樣：反應中樣品體積，
0.03mL；W：樣品質量，g；Cpr：樣本蛋白濃度，mg/mL
注意事項
1. 試劑二對人體有刺激性，請采取適當的防護措施。為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴乳膠手套操作。
2. 盡量避免使用在酸性條件下呈藍色或接近藍色的試劑，否則對本試劑盒的檢測結果產生干擾。
3. 樣品中不宜添加 Tween、Triton 和 NP-40 等去垢劑和 DTT、巰基乙醇等影響氧化還原反應的還原劑。
4. 如果樣品測定出來的吸光值在標準曲線范圍以外，需把樣品適當稀釋或濃縮后再進行測定。
5. 試劑盒 2-8℃保存。
總抗氧化能力（Total antioxidant capacity，T-AOC）試劑盒說明書（微量法）
AP-MX-EP說明書（無內毒素質粒大量試劑盒）
Tris-硼酸電泳緩沖液(5×TBE)
